植物无糖组织培养技术经过近20年的发展,基础理论的建立和研究已经成熟,但商业化的应用还处于起步阶段。在植物无糖组织快繁技术的应用中,CO2的供给和浓度的调控是其关键技术之一。在植物无糖组织培养过程中,为了增加培养容器中的CO2浓度,可采用两种不同的CO2补充方式,一种是在密封的容器上使用透气膜,通过自然换气方式提供小植株光合作用所需的CO2(Aitken-Christie et al.,1995)。随着无糖组织培养培养容器的不断增大,强制性换气系统得到了应用(Kozai T. et al.,2000;Xiao et al.2005)。与自然换气相比,强制性换气具有CO2浓度容易控制,操用方便,植物生长发育加快等特点。Xiao等(2005)在对calla lily和China fir进行的无糖培养研究表明,采用120L的培养容器,通过强制性换气系统直接输入CO2供植物生长。与传统组织培养方式(培养基中添加蔗糖)相比,calla
lily的培养周期缩短50%、苗木移栽成活率由50%提高到95%;China fir苗木质量显着提高,继代和生根过程合二为一,且没有愈伤组织的发生,而有糖培养则在基部产生愈伤组织,严重影响苗木移栽成活率。Xiao等(2005)等对Gerberas进行的无糖培养研究表明,与有糖培养相比,采用大规模容器和强制性换气系统进行的无糖组织培养,植株的叶面积、茎干重分别提高5.2和4.6倍,植株的净光合速率和叶绿素含量分别提高9.2和2.2倍,苗木生根率和移栽成活率分别由62%、57%提高到98%、95%。(Tanaka M. et al., 2005)、(Teixeira J.A. et al., 2006)进行桉树的无糖组织培养研究表明,一种新型的小培养容器Vitron能提高试管苗在无糖培养条件下的生长质量,适合进行无糖组织培养生产。
在植物无糖组织培养中,培养基质对试管苗生长来说也是一个非常重要的因素。Afreen-Zobayed等(1999)对甘薯进行了琼脂、gellan gum、蛭石、cellulose和Florialite等五种不同培养基质的无糖培养比较试验,研究结果表明,以Florialite为培养基质生产的试管苗质量优于以琼脂作为培养基质产生的试管苗,其中叶、根鲜重分别是后者的2.4和2.9倍,干重分别是后者的2.2和2.8倍,且以Florialite为基质产生的试管苗净光合速率高。(Xiao et al., 2006)对statice进行的无糖组织培养研究也表明,与琼脂相比,Florialite显着提高试管苗生长和根的发生,以及净光合速率。另外,光量子通量(Xiao et al., 2003)、培养容器换气次数(Xiao et al., 2006)等环境因子均对试管苗生长产生影响。
到目前为止,植物无糖组织快繁技术已经在60余种植物中获得成功。与有糖培养相比,无糖组织培养技术显示出其特有的优势。特别是对于木本植物来说,无糖组织培养技术能显着改善根的质量,提高生根率,消除了小植株生理和形态方面的紊乱,种苗质量显着提高(Kozai T. et al.,2005)。(Afreen. et al., 2002a, b)以咖啡植物作为研究对象,利用无糖组织培养技术进行了大量体细胞胚胎发生方面的研究,研究结果表明,无糖组织培养能提高体细胞的质量,减少玻璃化和不正常体细胞胚发生机率,而且体细胞发生发育时期、大小比较均匀,便于工厂化生产。研究指出,无糖组织培养技术可能成为体细胞胚胎发生机理研究的有效工具或途径。随着无糖组织培养技术的不断完善和成熟,这一技术已经开始在商业上慢慢得到应用和推广(Kozai T. et al.,2004;Kozai T. et al.,2006)。